叶绿体复合体Ⅴ又称F1F0-ATP 合酶，由 F1 和F0 两个亚单位组成。该酶利用呼吸链产生的质子电化学梯度催化ATP 合成，也可逆过程水解 ATP。复合体Ⅴ是线粒体氧化磷酸化和叶绿体光合磷酸化合成ATP的关键酶。
叶绿体复合体Ⅴ试剂盒 氧化磷酸化

叶绿体复合体Ⅴ试剂盒说明书

分光光度法 25 管/12 样

叶绿体复合体Ⅴ试剂盒 氧化磷酸化

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义：

叶绿体复合体Ⅴ又称F1F0-ATP 合酶，由 F1 和F0 两个亚单位组成。该酶利用呼吸链产生的质子电化学梯度催化ATP 合成，也可逆过程水解 ATP。复合体Ⅴ是线粒体氧化磷酸化和叶绿体光合磷酸化合成ATP的关键酶。

测定原理：

复合体Ⅴ水解ATP 产生ADP 和Pi，通过测定Pi 增加速率来测定复合体Ⅴ活性。

组成：

试剂二：粉剂×1 支，-20℃保存；临用前每支加入 1.3ml 蒸馏水，充分溶解备用，用不完的试剂仍-20℃保存；

试剂四：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加入 3ml 蒸馏水，充分混匀；溶解后 4℃保存一周；试剂五：粉剂×1 瓶, 4℃保存；临用前加入 10ml 蒸馏水，充分混匀；溶解后 4℃保存一周；试剂六：粉剂×1 瓶, 4℃保存；临用前加入 10ml 蒸馏水，充分混匀；溶解后 4℃保存一周；

定磷试剂的配制：按H2O: 试剂五:试剂六:试剂七=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷试剂应为浅黄色。若无色则试剂失效，若是蓝色则为磷污染（请根据需要，用多少配多少）；

注意：配试剂最好用新的烧杯、玻棒和玻璃移液器，或者一次性塑料器皿，以避免磷污染。

需自备仪器和用品：

可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1ml 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

叶绿体的提取：

1、称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞，加入 1ml 试剂一，用冰浴匀浆器或研钵匀浆，很快研磨或捣碎，30 秒内完成，使之成为匀浆液。

2、将匀浆液于 200g（离心率），4℃离心 1min。

3、弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，1500g，4℃离心 5min。

4、弃上清液，于沉淀中加入 0.5ml 试剂一混匀配成叶绿体悬浮液。混匀后测定叶绿体酶活性。

测定步骤：

1、酶促反应

混匀， 37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）准确水浴 30min

混匀，4000g，25℃离心 10min，取上清液

2、定磷

混匀，室温静置 10min 左右，在 660nm 处读取A 测定管和A 对照管，计算ΔA=A 测定管-A 对照管。

复合体Ⅴ活性计算：

标准条件下测定的回归方程为y = 1.274x + 0.004；x 为标准品浓度（mmol/L），y 为A 值。组织中复合体Ⅴ活性的计算:

按样本蛋白浓度计算

单位的定义：每mg 组织蛋白每分钟产生 1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。 复合体Ⅴ活性（nmol/min/mg prot）=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反总×106]÷(V 样×Cpr) ÷T=62.8× (ΔA-0.004) ÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

按样本鲜重计算

单位的定义：每g 组织每分钟产生 1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。

复合体Ⅴ活性（nmol/min /g 鲜重）=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反总×106]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T =31.37× (ΔA-0.004) ÷W

按细菌或细胞密度计算

单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟产生 1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。

复合体Ⅴ活性（nmol/min /104 cell）=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反总×106]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T=0.063× (ΔA-0.004)

V 反总：反应体系总体积，3×10-4 L； V 样：加入样本体积，0.125 ml；V 样总：加入提取液体积，0.5 ml；T：反应时间，30 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500 万。

叶绿体复合体Ⅴ试剂盒 氧化磷酸化