CS（EC 2.3.3.1）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体基质中，是三羧酸循环第一个限速酶，是三羧酸循环主要调控位点之一。
辅酶ⅡNADP(H)含量测定试剂盒分光光度法

辅酶ⅡNADP(H)含量测定试剂盒(分光光度法）

分光光度法

辅酶ⅡNADP(H)含量测定试剂盒分光光度法

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义：

CS（EC 2.3.3.1）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体基质中，是三羧酸循环第一个限速酶，是三羧酸循环主要调控位点之一。

测定原理：

CS 催化乙酰CoA 和草酰乙酸产生柠檬酰辅mei A，进一步水解产生柠檬酸；该反应促使无色的DTNB转变成黄色的TNB，在 412nm 处有特征吸光值。

组成：

CE009-25T/12S 试剂六：粉剂×1 支，-20℃保存，临用前加入 1.2ml 蒸馏水，用不完的试剂仍-20℃保存；

CE009-50T/24S 试剂六：粉剂×1 支，-20℃保存，临用前加入 2.4ml 蒸馏水，用不完的试剂仍-20℃保存；

自备仪器和用品：

可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1ml 玻璃比色皿、研钵、冰、无水乙醇和蒸馏水

样本的前处理：

组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：

称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞，加入 1ml 试剂一和 10μl 试剂三，用冰浴匀浆器或研钵匀浆。将匀浆 600g，4℃离心 5min。

弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11000g，4℃离心 10min。

上清液即胞浆提取物，可用于测定从线粒体泄漏的CS（此步可选做）。

在步骤④的沉淀中加入 200μl 试剂二和 2μl 试剂三，超声波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3

秒，间隔 10 秒，重复 30 次），用于线粒体CS 测定。

测定步骤：

1、分光光度计或酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 412nm，蒸馏水调零。

2、样本测定

在试剂五中加入 0.6ml 无水乙醇和 13ml 试剂四，混匀，37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）孵育 5min；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

测定管：在EP 管中加入 40μl 样本、880μl 试剂五和 40μl 试剂六，混匀，37℃反应 15min 后立即测

定吸光值A1。

对照管：在EP 管中加入 40μl 样本、880μl 试剂四和 40μl 试剂六，混匀，37℃反应 15min 后立即测定吸光值A2。

计算ΔA=A1-A2，每个测定管设一个对照管。

CS 活性计算：

按样本蛋白浓度计算：

单位的定义：每mg 组织蛋白每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。 CS（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=117.6×ΔA÷Cpr此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

按样本鲜重计算：

单位的定义：每g 组织每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。

CS（nmol/min /g 鲜重）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷（W× V 样÷V 样总）÷T=23.8×ΔA÷W

按细菌或细胞密度计算：

单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。

CS（nmol/min /104 cell）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷（500×V 样÷V 样总）÷T=0.0475×ΔA

V 反总：反应体系总体积，9.6×10-4 L；ε：TNB 摩尔消光系数，1.36×104 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm； V 样：加入样本体积，0.04 ml；V 样总：加入提取液体积，0.202 ml；T：反应时间，15 min；Cpr：样本 蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500 万。

辅酶ⅡNADP(H)含量测定试剂盒分光光度法