线粒体复合体Ⅳ又称细胞se素C 氧化酶，也是线粒体呼吸电子传递链主路和支路的共有成分，负责催化还原型细胞se素C 的氧化，并最终把电子传递给氧，生成水。
线粒体复合体Ⅳ试剂盒 氧化磷酸化

线粒体复合体Ⅳ试剂盒说明书

分光光度法 25 管/24 样

线粒体复合体Ⅳ试剂盒 氧化磷酸化

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义：

线粒体复合体Ⅳ又称细胞se素C 氧化酶，也是线粒体呼吸电子传递链主路和支路的共有成分，负责催化还原型细胞se素C 的氧化，并最终把电子传递给氧，生成水。

测定原理：

还原型细胞se素 C 在 550nm 有特征光吸收，线粒体复合体Ⅳ催化还原型细胞se素 C 生成氧化型细胞se素C，因此 550nm 光吸收下降速率能够反映线粒体复合体Ⅳ酶活性。

试剂的组成和配制：

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

样本的前处理：

组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：

1、准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞，加入 1ml 试剂一和 10ul 试剂三，用冰浴匀浆器或研钵匀浆。

2、将匀浆 600g，4℃离心 5min。

3、弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11000g，4℃离心 10min。

4、上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白，可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅳ（此步可选做）。

5、步骤 4 中的沉淀即为线粒体，加入 200ul 试剂二和 2uLl 试剂三，超声波破碎（冰浴，功率 20％或200W，超声 3s，间隔 10 秒，重复 30 次），用于复合体Ⅳ酶活性测定。

测定步骤：

1、分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 550nm，蒸馏水调零。

2、样本测定

工作液的配制：临用前取试剂四、试剂五、试剂六各一支，将试剂五和试剂六依次转移到试剂四中混合溶解；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

将工作液置于 37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）孵育 5min；

在 1ml 玻璃比色皿中加入 80μl 样本和 800μl 工作液，混匀，记录 550nm 处初始吸光值 A1 和 37℃

反应 30min 后的吸光值A2，计算ΔA=A1-A2。

注意事项:

1、若ΔA 大于 0.2，需将样本用试剂二稀释适当倍数（计算公式中乘以相应稀释倍数），使A1-A2 小于 0.2，可提高检测灵敏度。

2、动物肝脏样本由于酶活性过高， 1 分钟内吸光值就会到达平台期，务必先进行 2 个样本的预测定。可将样本用试剂二稀释 10~50 倍，反应时间缩到到 30 秒或 1 分钟（计算公式中代入实际反应时间，并乘 以相应稀释倍数）。其他样本可按照正常测定步骤进行。

复合体Ⅳ活力单位的计算：

按样本蛋白浓度计算

单位的定义：每mg 组织蛋白每分钟催化降解 1 nmol 还原型细胞se素C 定义为一个酶活力单位。复合体Ⅳ活力(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=19.20×ΔA÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

按样本鲜重计算

单位的定义：每g 组织每分钟催化降解 1nmol 还原型细胞se素 C 定义为一个酶活力单位。

复合体Ⅳ活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(W× V 样÷V 样总)÷T=3.88×ΔA÷W

按细菌或细胞密度计算

单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化降解 1nmol 还原型细胞se素C 定义为一个酶活力单位。复合体Ⅳ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.008×ΔA

V 反总：反应体系总体积，8.8×10-4 L；ε：细胞se素C 摩尔消光系数，1.91×104 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.08 ml；V 样总：加入提取液体积，0.202 ml；T：反应时间，30 min； Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500 万。

线粒体复合体Ⅳ试剂盒 氧化磷酸化