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品牌 | NobleRyder/诺博莱德 | 货号 | BF6015 |
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规格 | 50T/48S | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 磷酸戊糖途径途径中 6-磷酸葡萄糖脱氢酶(G6PDH)和 6PGDH 依次催化N | 应用领域 | 环保,化工,生物产业,农林牧渔,制药/生物制药 |
6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶(6 - phosphogluconate dehydrogenase, 6-PGDH)说明书
分光光度法 50 管/48 样
6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶 辅酶Ⅱ
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义:
磷酸戊糖途径途径中 6-磷酸葡萄糖脱氢酶(G6PDH)和 6PGDH 依次催化NADPH 合成,与能量的平衡、生长速率和细胞活力等密切相关。此外,6PGDH 逆境生理中具有重要作用。
测定原理:
6PGDH 催化 6-磷酸葡萄糖酸和NADP+生成NADPH,NADPH 在 340 nm 有特征吸收峰,而NADP+没有;通过测定 340nm 吸光度增加速率,计算 6PGDH 活性。
组成:
产品名称 | BF6015-50T/48S | Storage |
提取液:液体 | 60ml | 4℃ |
试剂一:液体 | 47.5ml | 4℃ |
试剂二:粉剂 | 1 瓶 | -20℃避光 |
试剂三:粉剂 | 1 瓶 | -20℃ |
说明书 | 一份 |
自备仪器和用品:
紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调式移液枪、1ml 石英比色皿和蒸馏水。
粗酶液提取:
1、细菌、细胞或组织样品的制备:
细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(ml)为 1000~5000:1 的比例(建议 2000 万细菌或细胞加入 1ml 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
组织:按照组织质量(g):提取液体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1ml 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2、血清(浆)样品:直接检测。
测定步骤:
分光光度计预热 30min,调节波长到 340 nm,蒸馏水调零。
将试剂二和试剂三转移至试剂一中充分溶解;在 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min 以上;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
取 1ml 石英比色皿,依次加入 50μl 样本和 950μl 试剂一,于 340nm 处测定 3min 内吸光值变化,第 10 s
吸光值记为A1,第 190s 吸光值记为A2。△A=A2-A1
注意:空白管只需要做一次。
6PGDH 活性计算公式
1、血清(浆)6PGDH 活力的计算:
单位的定义:每 ml 血清(浆)每分钟生成 1 nmol 的NADPH 定义为一个酶活力单位。
6PGDH(nmol/min/ml)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷V 样÷T=1071.8×ΔA
2、组织、细菌或细胞中 6PGDH 活力的计算:
按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每mg 组织蛋白每分钟生成 1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
6PGDH(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=1071.8×ΔA÷Cpr
按样本鲜重计算:
单位的定义:每g 组织每分钟生成 1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
6PGDH(nmol/min /g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=1071.8×ΔA÷W
按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟生成 1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
6PGDH(nmol/min /104 cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(2000×V 样÷V 样总) ÷T=0.536×ΔA
V 反总:反应体系总体积,1×10-3 L;ε:NADPH 摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光径, 1cm;V 样:加入样本体积,0.05 ml;V 样总:加入提取液体积,1 ml;T:反应时间,3 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本质量,g;2000:细菌或细胞总数,2000 万。
6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶 辅酶Ⅱ