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通用型DNA纯化回收试剂盒 核酸提取
  • 产品型号:43013
  • 厂商性质:生产厂家
  • 更新时间:2025-04-22
  • 访  问  量:196
简要描述:

本试剂盒既能从TAE 或TBE 琼脂糖凝胶中回收 DNA 片段,又能用于直接纯化 PCR 产物,还适用于酶切产物 DNA 片段的纯化回收、探针标记后的纯化回收、DNA 样本浓缩。使用本产品可回收 100bp-10kb 大小的DNA 片段,回收率可达 85%-95%。该试剂盒操作简便,得到的 DNA 片段可用于酶切、连接、测序等实验。
通用型DNA纯化回收试剂盒 核酸提取

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产品详情
品牌NobleRyder/诺博莱德货号43013
规格50次/100次/200次供货周期现货
主要用途用于酶切产物 DNA 片段的纯化回收、探针标记后的纯化回收、DNA 样本浓缩应用领域环保,化工,生物产业,农林牧渔,制药/生物制药

诺博莱德 通用型DNA纯化回收试剂盒 核酸提取


Universal DNA Purification Kit通用型 DNA 纯化回收试剂盒

目录号:43013

产品内容:

产品组成

43013-50

43013-100

43013-200

Buffer BL

5 ml

10 ml

20 ml

Buffer DB

40 ml

75 ml

150 ml

Buffer WB

13 ml

25 ml

50 ml

Buffer EB

10 ml

15 ml

20 ml

Spin Column With Collection Tubes

50 套

100 套

200 套

自备试剂:

无水乙醇

保存条件:

室温(15 ~ 25℃)

产品简介:

本试剂盒既能从TAE TBE 琼脂糖凝胶中回收 DNA 片段,又能用于直接纯化 PCR 产物,还适用于酶切产物 DNA 片段的纯化回收、探针标记后的纯化回收、DNA 样本浓缩。使用本产品可回收 100bp-10kb 大小的DNA 片段,回收率可达 85%-95%。该试剂盒操作简便,得到的 DNA 片段可用于酶切、连接、测序等实验。


具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准


注意事项:

1.  Buffer BL 的加入能够改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和稳定性,消除高温潮湿或其他不良环境因素对吸附柱造成的影响。收到货后 2 个月内,不用做柱平衡。

2.   使用前请先检查Buffer BL、Buffer DB 是否出现浑浊,如有混浊现象,可在 37℃水浴中加热几分钟,即可恢复澄清。

3.    切胶时,紫外照射时间应尽量短,以免对 DNA 造成损伤。

4.    回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关,初始量越少、洗脱体积越小,回收率越低。

操作步骤:

第一次使用前,请先在 Buffer WB 中加入无水乙醇,并打对勾标记,加入体积请参照瓶上的标签。

一、从琼脂糖凝胶中回收DNA 片段

1.   柱平衡:向吸附柱中(吸附柱放入收集管中)加入 100 ul Buffer BL,12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用当天处理过的柱子)

2.    切胶:在长波紫外灯下,用干净刀片将目的 DNA 条带切下,尽量切除不含 DNA 的凝胶。

3.    称重:将切下的含有目的 DNA 条带的凝胶,放入 1.5 ml 离心管中,称取凝胶重量(去除空管重量)。如果凝胶重量为 100mg,其体积可视为 100ul。

4.   溶胶:加入 倍体积 Buffer DB,56℃水浴,直到凝胶完quan溶解,期间颠倒混匀 2 次加速溶胶。

如果凝胶浓度大于 2%,应加入 6 倍体积 Buffer DB。对于回收<100 bp 的小片段,可在凝胶完quan溶解后,再加入 1.5 倍胶块体积的异丙醇以提高回收率。

5.  吸附:待溶液冷却至室温后加入吸附柱中,室温静置 1 min,然后 12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液。

如果总体积超过 750 ul,可分 2 次将溶液加入同一离心吸附柱中)

6.   漂洗:加入 600 ul 漂洗液Buffer WB,12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液。

7.   二次漂洗:重复操作步骤 6

8.    干燥:将吸附柱放回收集管中, 12,000 rpm 离心 2 min,甩干膜上残留的乙醇,防止其抑制下游反应。

9.   回收:将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 离心管中,在吸附柱中央加入 30 ~ 50 ul 洗脱液 Buffer EB,室温放置 2 min,12,000 rpm 离心 1 min 收集 DNA 片段。

注意:为增加回收效率,可将洗脱液在 65℃预热,也可将得到的溶液重新加入到离心管中,室温放置 2 min,再次离心收集。

二、 从 PCR 反应液或酶切反应液中回收 DNA 片段

1. 柱平衡:向吸附柱中(吸附柱放入收集管中)加入 100 ul 平衡液Buffer BL,12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用当天处理过的柱子)

2.   加结合液:估计PCR 反应液或酶切反应液的体积,向其中加入 5 倍体积溶液 Buffer DB,充分混匀。

(如果样本体积小于 100ul,用灭菌水补齐 100ul,以提高回收效率。)

3.   吸附:将上一步所得溶液加入一套吸附柱中,室温放置 1 min,12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液。

( 注意:吸附柱容积为 750ul,若样品体积大于 750ul 可分批加入)

4.漂洗:加入 600ul Buffer WB,12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液。

5.   二次漂洗:重复操作步骤 4

6. 干燥:将吸附柱放回收集管中, 12,000 rpm 离心 2 min,甩干膜上残留的乙醇,防止其抑制下游反应。

7.   洗脱:将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 离心管中,在吸附柱中央加入 30 ~ 50 ul 洗脱液Buffer EB,室温放置 2 min。12,000 rpm 离心 1 min 收集 DNA 片段。

注意:为增加回收效率,可将洗脱液在 60℃预热,也可将得到的溶液重新加入到离心管中,室温放置 2 min,再次离心收集。

 

 通用型DNA纯化回收试剂盒 核酸提取


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